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貨號：YJ2319                              規(guī)格：25管/12樣

線粒體復(fù)合體Ⅴ試劑盒說明書

可見分光光度法

正式測定前務(wù)必取 2-3 個預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測定

測定意義

線粒體復(fù)合體Ⅴ又稱F₁F₀-ATP合酶，廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞的線粒體中，由F1和F0兩個亞單位組成。該酶利用呼吸鏈產(chǎn)生的質(zhì)子電化學(xué)梯度催化ATP合成，也可逆過程水解ATP。此外，復(fù)合體Ⅴ還存在于葉綠體、異養(yǎng)菌和光合細菌中。復(fù)合體Ⅴ是線粒體氧化磷酸化和葉綠體光合磷酸化合成ATP的關(guān)鍵酶。

測定原理

復(fù)合體Ⅴ水解ATP產(chǎn)生ADP和Pi，通過測定Pi增加速率來測定復(fù)合體Ⅴ活性。

需自備的儀器和用品

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

試劑的組成和配制

試劑一：25mL×1瓶，-20℃保存；

試劑二：25mL×1瓶，-20℃保存；

試劑三：1 mL×1瓶，-20℃保存；試劑四：粉劑×1支，-20℃保存；臨用前每支加入1.3mL 蒸餾水，充分溶解備用，用不完的試劑仍-20℃保存;

試劑五：6mL×1瓶，4℃保存；

試劑六：粉劑×1瓶，4℃保存；臨用前加入3mL蒸餾水，充分混勻；溶解后 4℃保存一周；

試劑七：粉劑×1瓶, 4℃保存；臨用前加入10mL蒸餾水，充分混勻；溶解后4℃保存一周；

試劑八：粉劑×1瓶, 4℃保存；臨用前加入10mL蒸餾水，充分混勻；溶解后4℃保存一周；

試劑九：液體 10mL×1 瓶，室溫保存。

定磷試劑的配制：按 H₂O: 試劑七:試劑八:試劑九=2:1:1:1的比例配制，配好的定磷試劑應(yīng)為淺黃色。若無色則試劑失效，若是藍色則為磷污染（請根據(jù)需要，用多少配多少）。

注意：配試劑建議用新的燒杯、玻棒和玻璃移液器，或者一次性塑料器皿，以避免磷污染。

樣本的前處理：

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離：

① 準確稱取0.1g組織或收集500萬細菌或細胞，加入1mL試劑一和10uL試劑三，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

② 將勻漿600g，4℃離心 5min。

③ 棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11000g，4℃離心 10min。

④ 上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白，可用于測定從線粒體泄漏的復(fù)合體Ⅴ（此步可選做）。

⑤ 步驟④中的沉淀即為線粒體，加入800uL試劑二和8uL試劑三，超聲波破碎（冰浴，功率 20％或200W，超聲3s，間隔10秒，重復(fù)30次），用于復(fù)合體Ⅴ酶活性測定。

測定步驟

• 酶促反應(yīng)

混勻，4000g，25℃離心 10min，取上清液

• 定磷

混勻，室溫靜置10min左右，在660nm處讀 A測定管和A對照管，計算ΔA=A 測定管-A對照管。

復(fù)合體Ⅴ活性計算

標準條件下測定的回歸方程為 y = 1.2487x + 0.0361；x為標準品濃度（mmol/L），y為A值。

1、組織中復(fù)合體Ⅴ活性的計算:

（1）按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘產(chǎn)生1nmol無機磷定義為一個酶活性單位。

復(fù)合體Ⅴ活性（nmol/min /mg prot）=[(ΔA-0.0361) ÷1.2487×V 反總×10⁶]÷(V 樣×Cpr) ÷T=64×(ΔA-0.0361) ÷Cpr

此法需要自行測定樣本蛋白質(zhì)濃度。

（2）按樣本鮮重計算

單位的定義：每 g 組織每分鐘產(chǎn)生1 nmol 無機磷定義為一個酶活性單位。

復(fù)合體Ⅴ活性（nmol/min/g 鮮重）=[(ΔA-0.0361) ÷1.2487×V反總×10⁶]÷(W×V樣÷V樣總) ÷T=51.7× (ΔA-0.0361) ÷W

（3）按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每1萬個細菌或細胞每分鐘產(chǎn)生1nmol無機磷定義為一個酶活性單位。

復(fù)合體Ⅴ活性（nmol/min/10⁴cell）=[(ΔA-0.0361)÷1.2487×V反總×10⁶]÷(500×V樣÷V樣總) ÷T=0.103×(ΔA-0.0361)

V 反總：反應(yīng)體系總體積，6×10^-4 L；V 樣：加入樣本體積，0.25 mL；V 樣總：加入提取液體積，0.808 mL；T：反應(yīng)時間，30 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/mL；W：樣本質(zhì)量，g；500：細胞或細菌總數(shù)，500 萬。

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